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Manipolazione degli esemplari catturati
Alessandro Longobardi – ISPRA CN-Lab
Manipolazione degli esemplari catturati
Indice
Stabulazione
Parametri da monitorare
Come controllare i parametri
Sedazione
Perché anestetizzare i pesci?
Gli anestetici
La tricaina metansulfonato (MS-222)
Come utilizzare l’MS-222
I fattori che influenzano l’azione dell’anestetico
Gli stadi dell’anestesia
Come utilizzare l’MS-222
Rilascio degli individui catturati
2
Stabulazione
Manipolazione degli esemplari catturati
Stabulazione
n. di passate
n. incrementi
n. pesci attesi
taglia dei pesci attesa
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Manipolazione degli esemplari catturati
Stabulazione Obiettivo
Parametri da monitorare
Sopravvivenza e il benessere
degli esemplari catturati
Densità Temperatura
Ossigeno
Altri parametri: pH, sostanze azotate (ammoniaca, nitriti), rumore, luce diretta
5
Manipolazione degli esemplari catturati
Stabulazione
Come controllare i parametri
Temperatura
Densità Ossigeno
• Ricambio dell’acqua in
Non esiste una regola. L’utilizzo di sistemi di
continuo mediante pompe, o
Immissione nei areazione o di
all’occorrenza;
contenitori di un ossigenazione
• Posizionamento dei
numero limitato di dell’acqua.
contenitori parzialmente
esemplari
sommersi nei pressi della riva;
• Condizioni
• Utilizzo di contenitori forati
• Buon senso
posizionati direttamente
• Esperienza
nell’acqua lontano dal campo di
azione dell’elettrostorditore.
Altri parametri: pH, sostanze azotate (ammoniaca, nitriti), rumore, luce diretta
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Sedazione
Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione Ragioni etiche
Perché anestetizzare i pesci?
Ragioni pratiche
1) Facilitazione del lavoro
Ashley et al., 2007 I teleostei posseggono i nocicettori
(O. mykiss) (i neuroni sensoriali responsabili
2) Eliminare il dolore nei pesci della percezione del dolore) e che
Roques et al., 2010 questi sono molto simili a quelli dei
(N. tilapia) mammiferi
L’utilizzo di anestetici consente di
Harms and Bakal 1995 minimizzare lo stress indotto dalla
3) Ridurre stress, traumi e ferite manipolazione riducendo l’attività
Myszkowski et al. 2003
(T. tinca) del sistema nervoso centrale e
periferico
Kumlu and Yanar, 1999
(S. aurata) Riduce la possibilità che si procurino
ferite e quindi anche la suscettibilità
Ross, 2001 nei confronti di patogeni
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Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
Gli anestetici
Nome Principio attivo Formula molecolare Dosaggio utilizzato nei
commerciale salmonidi
Per via parenteraleTricaina
MS-222 C9H11NO2Tramite
*C10H15NOinalazione
5S 35-100 (mg/l)
metansulfonato
Benzocaina Benzocaina C9H11NO2 25-50 (mg/l)
Clove oil Eugenolo C10H12O2 25-100 (mg/l)
(chiodi di garofano)
AQUI-S Isoeugenolo C10H12O2 17-40 (mg/l)
Chinaldina Chinaldina C10H9N C10H9NO4S2− n.d.
Fenossietanolo 2-Fenossietanolo C8H10O2 0.1-0.5 (ml/l)
Metomidate Metomidate C13H15ClN2O2 1-10 (mg/l)
Etomidate Etomidate C14H16N2O2 2 (ml/l)
Mod. da Ross & Ross 2008
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Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
Gli anestetici
Studi
• Dosi
Vantaggi
• Tempi di induzione
e
•Tempi di ricovero
Svantaggi
• Effetti avversi
10Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
La tricaina metansulfonato (MS-222)
Indicazioni terapeutiche
Tempi di sospensione
11Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
La tricaina metansulfonato (MS-222)
Autore Titolo sintetico Rivista
Sink et al., 2007 Clove Oil used at lower concentrations is less effective than North American Journal of
MS-222 at reducing cortisol stress responses in rainbow trout Fisheries Management
Pirhonen & Schrek, Effects of anaesthesia with MS-222, clove oil and CO2 on feed Aquaculture
2003 intake and plasma cortisol in O. mykiss
Wagner et al., The ability of clove oil and MS-222 to minimize handling stress Aquaculture Research
2003 in rainbow trout
Cho & Heath, Comparison of tricaine MS222 and clove oil: effects on the Aquaculture Research
2000 physiology of juvenile chinook salmon O. tshawytscha .
Prince & Powell, Clove oil as an anaesthetic for invasive field procedures on North American Journal of
2000 adult rainbow trout. Fisheries Management
Keene et al., 1998 The efficacy of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout, Aquaculture Research
Oncorhynchus mykiss.
Anderson et al., Use of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout and effects North American Journal of
1997 on swimming performance. Fisheries Management
12Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
La Tricaina metansulfonato (MS-222)
I fattori che influenzano l’azione di un anestetico
Biotici Abiotici
-Sesso -Qualità e composizione dell’acqua
-Età -Temperatura
-Peso -Ossigeno
-Stadio di sviluppo
-Stato fisiologico e di salute
-Stadio riproduttivo
13Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
La Tricaina metansulfonato (MS-222)
Le fasi dell’anestesia
Parametri da monitorare: Il nuoto Ross & Ross, 2008
La Postura
Il comportamento
La ventilazione branchiale
Biometrie, identificazione
Biometrie, prelievo di tessuti
Biometrie, prelievo di tessuti
Solo interventi invasivi ,
necessita di ventilazione
forzata
14Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
La Tricaina metansulfonato (MS-222)
Le fasi dell’anestesia
15Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
La Tricaina metansulfonato (MS-222)
Le fasi dell’anestesia
16Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
Dosi
Come utilizzare l’MS-222
Linee guida Articolo recente su S. cettii
Scardi et al., 2007 Rossi et al., 2019
10 --------> 35 mg/l
0,1 --------> 0,35 g/10l
Soluzione madre --------> 10g/l 10-35 ml/10l
17Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
Come utilizzare l’MS-222
Inversamente
MS-222 Acidificazione dell’acqua proporzionale alla
durezza dell’acqua.
pH
1) Stress fisiologico
2) Causare danni a epidermide e cornea
18Manipolazione degli esemplari catturati
Sedazione
Come utilizzare l’MS-222
MS-222 Tamponare la soluzione Stabilizzazione del pH
NaHCO3
Dose doppia rispetto a quella dell’anestetico
Soluzione madre 10g/l MS-222 + 20g/l NaHCO3
19Rilascio degli individui catturati
Manipolazione degli esemplari catturati
Rilascio degli individui catturati
Predisporre degli appositi contenitori per il risveglio
Acqua alla stessa temperatura di quella del fiume, pulita e ben
ossigenata
Parametri da monitorare: Il nuoto
La Postura
Il comportamento
La ventilazione branchiale
21Manipolazione degli esemplari catturati
Fine
PE R
Z I E
A
R
G
N Z IO N E
L’ A T T E
22Titolo
Bibliografia
Anderson G., McKinley R.S., Colavecchia M., 1997. The Use of Clove Oil as an Anesthetic for
Rainbow Trout and Its Effects on Swimming Performance. North American Journal of Fisheries
Management 17(2):301-307
Ashley P.J., Sneddon L.U., McCrohan C.R., 2007. Nociception in fish: stimulus-response properties of
receptors on the head of trout Oncorhynchus mykiss. Brain Res. 1166: 47-54.
Cho G.K., Heath D.D., 2000. Comparison of tricaine methanesulphonate (MS222) and clove oil
anaesthesia effects on the physiology of juvenile chinook salmon Oncorhynchus tshawytscha
Walbaum). Aquaculture Research 31(6):537 – 546
Harms C.A., Bakal R.S., 1995. Techniques in fish anesthesia. J Sm Exot Anim Med 3:19-25.
Keene J.L., Noakes D.L.G., Moccia R.D. Soto C.G., 1998. The efficacy of clove oil as an anaesthetic
for rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture Research, 29(2): 89 -101
Kumlu M., Yanar M., 1999. Effects of the anesthetic quinaldine sulphate and muscle relaxant
diazepam on sea bream juveniles (Sparus aurata). Israeli J Aquacult 51:143-147.
23Titolo
Bibliografia
Myszkowski L., Kamiński R., Wolnicki J., 2003. Response of juvenile tench Tinca tinca (L.) to the
anaesthetic 2-phenoxyethanol. J. Appl. Ichthyol. 19:142-145.
Pirhonen J., Schrek C.B., 2003. Effects of anesthesia with MS-222, clove oil and CO2 on feed intake
and plasma cortisol in steelhead trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture 220(1-4):507-514
Prince A., Powell C., 2000. Clove Oil as an Anesthetic for Invasive Field Procedures on Adult Rainbow
Trout. North American Journal of Fisheries Management, 20(4): 1029-1032.
Roques J.A.C., Abbink W., Geurds F., Van de Vis J.W., Flik G., 2010. Tailfin clipping, a painful
procedure: Studies on Nile tilapia and common carp. Physiol. Behav. 101:533-540.
Ross L.G., 2001. Restraint, anaesthesia, and euthanasia. In: Wildgoose WH, ed. BSAVA Manual of
Ornamental Fish, 2nd ed. Gloucester: BSAVA. p. 75-83.
Ross L.G. & Ross B., 2008. Anaesthetic and sedative techniques for aquatic animals (Third
Edition). Rev Fish Biol Fisheries 20, 139–140.
24Titolo
Bibliografia
Rossi A.R., Petrosino G., Milana V., Martinoli M., Rakaj A., Tancioni L., 2019. Genetic identification of
native populations of Mediterranean brown trout Salmo trutta L. complex (Osteichthyes:
Salmonidae) in central Italy. The European Zoological Journal, 424–431.
Scardi M., Tancioni L., e Martone C., 2007. Protocollo di campionamneto e analisi della fauna ittica
dei sistemi lotici. In: Metodi biologici per le acque, Serie Manuali e linee guida, 2007ISPRA 31 p.
Sink T.D., Strange R.J., Sawyers R.E., 2007. Clove Oil Used at Lower Concentrations is Less Effective
than MS-222 at Reducing Cortisol Stress Responses in Anesthetized Rainbow Trout. North American
Journal of Fisheries Management, 27:1, 156-161.
Wagner G.N., Singer T.D., McKinley R.S. 2003. The ability of clove oil and MS-222 to minimize
handling stress in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). Aquaculture Research, 34: 1139-
1146
25Titolo
Materiale in rete
PROTOCOLLO DI CAMPIONAMENTO E ANALISI DELLA FAUNA ITTICA
DEI SISTEMI LOTICI https://www.isprambiente.gov.it/files/pubblicazioni/manuali-
lineeguida/metodi-biologici-acque/fiumi-fauna.pdf
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